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01 校正的網織紅細胞計數(網織紅細胞計數的網織紅細胞計數校正)
Instagram刷粉絲, Ins買粉絲自助下單平台, Ins買贊網站可微信支付寶付款2024-05-14 04:33:43【】0人已围观
简介網織紅細胞計數的網織紅細胞計數校正網織紅細胞計數一般以占外周血紅細胞(RBC)百分數表示,因此易受貧血程度的影響。矯正方法有兩種:網織紅細胞百分數與紅細胞絕對數乘積即絕對網織紅細胞計數(正常范圍:24
網織紅細胞計數的網織紅細胞計數校正
網織紅細胞計數一般以占外周血紅細胞(RBC)百分數表示,因此易受貧血程度的影響。矯正方法有兩種:網織紅細胞百分數與紅細胞絕對數乘積即絕對網織紅細胞計數(正常范圍:24 000 ~ 84 000/ 立方毫米)。另一消除貧血程度影響的方法是,網織紅細胞百分數與實際紅細胞壓積的積再除以正常紅細胞壓積(45)。值得注意的是,上述矯正方法往往會使網織紅細胞計數低于實際值,因此如果觀察值已較低,則矯正值無意義。矯正僅用于網織紅細胞百分數增高時
網織紅細胞生成指數RPI校正值=1/2網織紅細胞比值
正確答案:C
解析:計算公式:RPI=被測Hct/正常人Hct×1/2×被測網織紅細胞百分比
。
測定網織紅細胞有何意義?
網織紅細胞參考值:成人為0.008~0.02,或(25~75)×10^9/L;初生兒為0.02~0.06。
(1)網織紅細胞計數可以判斷骨髓紅細胞系統造血功能,如溶血性貧血和急性失血后5~10天,網織紅細胞增高。而典型再生障礙性貧血病例,則降低。
(2)可作為療效觀察指標,故網織紅細胞計數為對貧血病人經常隨訪檢查項目之一。
(3)有人認為僅用網織紅細胞百分比或絕對值表達還不夠確切,為此提出在貧血時最好計算網織紅細胞生成指數(reticulocytepro-ctionindex,RPI)。它代表網織紅細胞的生成相當于正常人的多少倍。
RPI=(網織紅細胞比例×100/2)×(病人紅細胞比積/正常人紅細胞比積)
"2"為網織紅細胞成熟時間(天),正常人紅細胞比積,男性定為0.45,女性為0.40。如紅細胞比積正常時,網織紅細胞成熟時間應為1天。網織紅細胞比值即在油鏡下選擇紅細胞分布均勻、網織紅細胞染色較好的部分計數1000個紅細胞中的網織紅細胞數,除以1000即為網織紅細胞比值。
也可用網織紅細胞校正值(買粉絲rrectedreticulocyte買粉絲unt)報告(見下式):
網織紅細胞校正值=網織紅細胞比值×(病人紅細胞比積/正常人紅細胞比積)
血細胞計數板計數的誤差主要來自哪些方面?應如何盡量減少誤差,力求準確?
血細胞計數的誤差分別來源于技術誤差和固有誤差。其中由于操作人員采血不順利,器材處理、使用不當,稀釋不準確,細胞識別錯誤等因素所造成的誤差屬技術誤差;而由于儀器(計數板、蓋片、吸管等)不夠準確與精密帶來的誤差稱儀器誤差,由于細胞分布不均勻等因素帶來的細胞計數誤差屬于分布誤差或計數域誤差(filed error)。儀器誤差和分布誤差統稱為固有誤差或系統誤差。技術誤差和儀器誤差可通過規范操作、提高熟練程度和校正儀器而避免或糾正,但細胞分布誤差卻難于徹底消除。因此,搞好紅細胞計數的質量控制一般需采用以下措施。
1.避免技術誤差,糾正儀器誤差
(1)所用器材均應清潔干燥,計數板、血蓋片、微量吸管及刻度吸管的規格應符合要求或經過校正。①計數板的鑒定:要求計數室的臺面光滑、透明,劃線清晰,計數室劃線面積準確。必要時采用嚴格校正的目鏡測微計測量計數室的邊長與底面積,用微米千分尺測量計數室的深度。美國國家標準局(NBS)規定每個大方格邊長的誤差應小于1%,即1±0.01mm,深度誤差應小于2%,即0.1±0.002mm。若超過上述標準,應棄之不用。②血蓋片應具有一定的重量,平整、光滑、無裂痕,厚薄均勻一致,可使用卡尺多點測量(至少在9個點),不均勻度在0.002mm之內。必要時采用平面平行儀進行測量與評價,要求呈現密集平行的直線干涉條紋。最簡單的評價方法是將潔凈的蓋片緊貼于干燥的平面玻璃上,若能吸附一定的時間不脫落,落下時呈弧線形旋轉,表示蓋片平整、厚薄均勻。同時,合格的蓋片放置在計數室表面后,與支持柱緊密接觸的部位可見到彩虹。精選出的蓋片與其他蓋片緊密重合后,在掠射光線下觀察,如見到完整平行的彩虹條紋表示另一枚蓋片質量也符合要求。③目前臨床實驗室多采用一次性微量采血管采集毛細血管血,除注意定點購買使用信譽較好廠家的產品外,還應對每一批量的采血管進行抽樣檢查,可通過水銀稱重法或有色溶液比色法進行校正,誤差不應超過±1%。
(2)紅細胞稀釋液應等滲、新鮮、無雜質微粒。
(3)嚴格操作,從消毒、采血、稀釋、充池到計數都應規范,尤其應注意的是血樣稀釋及充池時既要作到充分混勻,又要防止劇烈震蕩為破壞紅細胞。必須一次性充滿計數室,防止產生氣泡,充入細胞懸液的量以不超過計數室臺面與血蓋片之間的矩形邊緣為宜。
(4)報告法定計量單位。
2.縮小計數域誤差或分布誤差 由于血細胞在充入計數室后呈隨機分布或稱Poisson分布( ),而我們所能計數的細胞分布范圍是有限的,由此造成的計數誤差稱為計數域誤差或分布誤差。縮小這種誤差的有效方法就是盡量擴大細胞計數范圍和計數數目,一般先進行誤差估計,然后決定所需計數的數目和計數范圍,只要能將誤差控制在允許范圍內即可。Berkson指出,當使用同一支吸管、同一面計數室,計數0.2mm2面積的細胞數,有望將 CV控制在可接受的7%以內。對于紅細胞計數而言,由于紅細胞數量較多,在計數室中顯得比較“擁擠”,根據Poisson公式( )推斷, 。欲將誤差控制在變異百分數5%以內,至少需要在計數室中計數400個紅細胞,因此要求計數五個中方格的紅細胞。事實上Berkson還通過實驗證明,紅細胞的計數域誤差為s=0.92 ,較理論誤差(Poisson分布誤差)要小。
3.排除異常標本的干擾 白細胞數量在正常范圍時,相對于紅細胞數量來講,其影響可忽略,但如白細胞過高(>100×109/L),則應對計數結果進行校正。方法是:①實際RBC=計得RBC-WBC。如當紅細胞換算后為3.5×1012/L、白細胞換算后為100×109/L時,病人實際紅細胞數應為3.4×1012/L。②在高倍鏡下計數時,避開有核細胞。有核細胞體積比正常紅細胞大,中央無凹陷,無草黃色折光,可隱約見到細胞核。此外,當病人急性嚴重貧血時網織紅細胞可提前大量釋放,也給紅細胞計數帶來一定的干擾,而且影響網織紅細胞絕對值計算結果。其校正方法有待探討。
血細胞計數堅持什么樣的計數法則?
目前臨床血液一般檢查最常用血液分析儀,國內大中型醫院普通存在多臺相同或不同生產廠家的血細胞分析儀,而型號及試劑不同的檢測系統對同一標本相同項目的檢測結果間的差異,有時會遠遠大于可接受的誤差范圍。血細胞計數的誤差分別來源于技術誤差和固有誤差。其中由于操作人員采血不順利,器材處理、使用不當,稀釋不準確,細胞識別錯誤等因素所造成的誤差屬技術誤差;而由于儀器(計數板、蓋片、吸管等)不夠準確與精密帶來的誤差稱儀器誤差,由于細胞分布不均勻等因素帶來的細胞計數誤差屬于分布誤差或計數域誤差。儀器誤差和分布誤差統稱為固有誤差或系統誤差。技術誤差和儀器誤差可通過規范操作、提高熟練程度和校正儀器而避免或糾正,但細胞分布誤差卻難于徹底消除。因此,在血液細胞計數上堅持以下原則:
一、堅持避免技術誤差,糾正儀器誤差
(1)所用器材均應清潔干燥,計數板、血蓋片、微量吸管及刻度吸管的規格應符合要求或經過校正。
(2)紅細胞稀釋液應等滲、新鮮、無雜質微粒。
(3)嚴格操作,從消毒、采血、稀釋、充池到計數都應規范,尤其應注意的是血樣稀釋及充池時既要作到充分混勻,又要防止劇烈震蕩為破壞紅細胞.必須一次性充滿計數室,防止產生氣泡,充入細胞懸液的量以不超過計數室臺面與血蓋片之間的矩形邊緣為宜。
(4)報告法定計量單位。
二、縮小計數域誤差或分布誤差
由于血細胞在充入計數室后呈隨機分布或稱Poisson分布,而我們所能計數的細胞分布范圍是有限的,由此造成的計數誤差稱為計數域誤差或分布誤差。縮小這種誤差的有效方法就是盡量擴大細胞計數范圍和計數數目,一般先進行誤差估計,然后決定所需計數的數目和計數范圍,只要能將誤差控制在允許范圍內即可。
三、排除異常標本的干擾
白細胞數量在正常范圍時,相對于紅細胞數量來講,其影響可忽略,但如白細胞過高(>100×109/L),則應對計數結果進行校正。在高倍鏡下計數時,避開有核細胞。有核細胞體積比正常紅細胞大,中央無凹陷,無草黃色折光,,可隱約見到細胞核。此外,當病人急性嚴重貧血時網織紅細胞可提前大量釋放,也給紅細胞計數帶來一定的干擾,而且影響網織紅細胞絕對值計算結果。
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